Animales de laboratorio. Animales de laboratorio, objetivos y métodos de su uso en virología. Términos y definiciones

En el trabajo diagnóstico de los laboratorios bacteriológicos, a menudo es necesario recurrir a la infección del llamado Laboratorio, o experimentados, animales. Con mayor frecuencia en la práctica cotidiana, se utiliza para este propósito de los animales pequeños, más baratos,: ratones blancos y ratas, conejillos de indias, conejos y de pájaros y pollos. Menos a menudo use perros y gatos, incluso menos a menudo. diferentes tipos animales de granja. El propósito de los métodos de investigación biológica es determinar la patogenicidad o el grado de virulencia del material en estudio, se libera del material de los cultivos puros de microbios, la separación de microorganismos patógenos de la mezcla con especies de saprofitos, etc. Uso generalizado de Animales de laboratorio y en práctica serológica: conejillos de indias - Para obtener un complemento, conejos (ovejas, terneros), en la fabricación de diversos sueros de aglutinización, hemolisina, eritrocitos, etc. para la fabricación de medios de nutrientes especiales de animales, sangre, suero, varios órganos, tejidos, etc. obtenido. Los animales de laboratorio se utilizan ampliamente para determinar las cualidades de las preparaciones biológicas y quimioterapéuticas, así como el trabajo científico y experimental. Los animales de laboratorio también sirven para diagnosticar algunas enfermedades infecciosas, modelando procesos infecciosos agudos y crónicos experimentales, el establecimiento de virulencia y toxiosis de las cepas estudiadas de microbios, determinando la actividad de vacunas preparadas e investigaciones sobre inofensivos.

Los laboratorios bacteriológicos para el trabajo diario generalmente son animales de laboratorio reproductores en viveros especialmente organizados para este fin. Esto hace posible recibir siempre en cantidad suficiente y calidad impecable del material experimental. Si los animales no están criados, sino que solo se encuentran en el laboratorio, entonces la habitación para ellos se llama - Vivari. Las nuevas fiestas de animales se compran en viveros. Las condiciones de detención y alimentación en estas divisiones son casi similares, por lo tanto, en el material anterior, no habrá diferenciación entre las estructuras de laboratorio especificadas.

Breve información sobre el contenido, la reproducción, la alimentación y las enfermedades de los animales de laboratorio.

El contenido de los animales en los viveros debe, si es posible, corresponde a las condiciones de existencia en la naturaleza. Esta disposición está especialmente relacionada con la naturaleza, nacida en la voluntad de animales y aves (palomas silvestres, gorriones, ratones y ratas grises caseras). En condiciones adversas de detención y condiciones de alimentación, estos animales mueren rápidamente en cautiverio (especialmente gorriones y ratones grises). El requisito previo para el trabajo exitoso de la guardería está observando estrictamente todas las reglas veterinarias y sanitarias, zootécnicas y zoológicas. Este último proporciona el contenido de animales en células amplias, ligeras, secas y limpias, en bien ventiladas, con temperatura ambiente normal, alimentación racional y completa y medidas preventivas para prevenir diversas enfermedades. Un gran valor para la guardería tiene una buena composición de los fabricantes (machos y hembras).

La guardería (vivario) debe tener varios compartimentos para el contenido de varios tipos de animales (conejos, conejillos de indias, ratones, etc.). La estructura de Vivaria incluye:

    compartimento para la cuarentena y adaptación de animales recién ingresados;

    clínica biológica experimental para el mantenimiento de animales en la experiencia;

    aisladores para enfermedades infecciosas sospechosas y, obviamente, animales enfermos, cuya destrucción bajo los términos del experimento no es deseable;

    habitación experimental (o manipulación), en la que pesas, termometría, infección, vacunación de animales, que se llevan sangre y algunos otros procedimientos.

El equipo de las instalaciones experimentales se determina en cada caso particular de tareas y condiciones de la investigación científica.

El compartimento de cuarentena, una rama para experimentar y aislante para animales infectados se coloca en las habitaciones, estrictamente aislada de la otra y de todas las demás instalaciones de WiVarium.

Además de los componentes principales de las unidades estructurales, el VIVARIUM debe contener:

a) Alimentación de dos locales adyacentes para su procesamiento y fabricación de alimentos con salidas independientes en el corredor de cada habitación, despensa con jardines especialmente equipados (metal o tensiones en el interior) y refrigeradores para almacenar acciones de alimentación,

b) Desinfección y compartimento de lavado de 2 habitaciones combinadas por un autoclave transitorio o una cámara de lágrimas.

El trabajo del compartimiento de desinfección y lavado está determinado por el estado del material que ingresa al procesamiento. Un material infectado, tal como células, ropa de cama, alimentadores, primero desinfectado y luego mecanizado y lavado. El material que no representa el peligro para la infección es, primero en ser limpiado mecánicamente, y luego (si es necesario) esterilización.

La lavadora en ViVarium organizada adecuadamente tiene un canal de basura para eliminar las aguas residuales y el montacargas para la entrega a material y equipo de vivienda.

Junto al departamento desinfectante y de lavado se coloca un almacén de un inventario limpio (repuesto) con células, bebedores, alimentadores, etc., locales domésticos y una unidad sanitaria (ducha y inodoro) para personal de servicio.

De acuerdo con las reglas sanitarias existentes, el VIVARIO se coloca en un edificio ubicado por separado o en el piso superior del cuerpo del laboratorio. Al colocar VIVARIO en el cuerpo del laboratorio, debe estar completamente aislado de todas las demás habitaciones.

Los locales para el contenido de los animales de laboratorio deben ser cálidos, ligeros y secos con calefacción central, iluminación natural y artificial, ventilación forzada de suministro, agua caliente y agua fría.

Los pisos en Vivaria están hechos de material impermeable, sin zócalos, con un sesgo de agujeros o canalones unidos a las aguas residuales. Las paredes están cubiertas con azulejos acristalados, techos y puertas están pintados con pintura al óleo.


animales de laboratorio, los animales se cultivan especialmente para la investigación médica, veterinaria y biológica sobre ellos. A tradicional L. g. Cree ratones blancos, ratas blancas, varios tipos de hámsters, conejillos de indias, conejos, gatos, perros; A no convencional - ratas de algodón, firewalls, gerbos, hurones, oposmos, armadores, monos, mini-cerdos, mini-burros, animales de muestra, peces, anfibios, etc. Hay un grupo de aves de laboratorio (pollos, palomas, crips, etc. .). además L. g.Las mascotas se utilizan en experimentos, más a menudo ovejas y cerdos. Los productores de suero inmune y diagnóstico son caballos, burros, carneros y conejos. Encuentre el uso en el experimento y muchos invertebrados (gusanos, ácaros, insectos, como Drosophyla), así como los más simples.

L. g. Controlado en indicadores genéticos, ambientales, morfológicos y bajo salud. Romperlos en viveros especiales o en viveros con instituciones científicas. Utilizado en el experimento no lineal. L. g. Debe tener un alto grado de heterocigencia. Cuanto menor sea la población cerrada de corpiños de animales no lineales, mayor será el incremento de la endogamia entre ellos. Para los estudios, los animales homocigotos (consanguíneos, lineales) derivados basados \u200b\u200ben la envejecida cercana se utilizan más más anchas que (Fig. 1). Se sabe alrededor de 670 líneas de ratones, 162 ratas de ratas, 16 líneas de conejillos de indias, 66 líneas de hámsters, 4 líneas de arena y 7 líneas de pollos. Cada línea tiene sus propias características en un conjunto de genes, sensibilidad a diversos antígenos y factores de estrés. Los animales lineales se controlan sistemáticamente para la homocigosidad. Durante la dilución L. g. Obtenga 5 camadas por año en ratones, en promedio 7 ratones en cada basura, respectivamente, ratas - 5 y 7, en Guinea Pigs - 3 y 5, conejos - 4 y 6. Habitaciones para L. g. (Vivaria) debe ser altamente fase, espaciosa, con un intercambio de aire de 10 veces de 1 hy humedad del 50-65%. En 1 m 2 del área, se colocan 65 adultos o 240 ratones jóvenes, 20-100 ratas, 30-40 hámsters, 15-18 cobayas, 3-4 conejos. En una celda, se deja que no contenga más de 15 ratones, 10 ratas, 5 hámsters y conejillos de indias, 1 conejo. Al menos el 50% del área de Vivarium se administra bajo los locales notables. Para evitar el intercambio de agentes infecciosos, el contenido no está permitido. especies diferentes L. g. En una habitación o jaula. Los ratones, las ratas, los conejillos de indias y los hámsters contienen principalmente en baños de plástico con forma de cono con una tapa de malla; Conejos, perros, monos y aves - en células metálicas. Los baños y las células se colocan en 1-6 niveles en bastidores (Fig. 2), equiparlos con alimentadores automáticos de beber y bunker, y desinfectarse con cuidado físico o químico con cuidado. Los baños de ratones y ratas son reemplazados por limpios. La eliminación de la basura y el fregadero se producen en una sala especial equipada con dispositivos o lavadoras apropiadas. Kordat L. g. Feeds naturales o concentrados bradetizados en los requisitos diarios desarrollados. Se le pregunta la comida bradita en los comederos durante varios días. Sirve L. g. Personal capacitado, realizado examen médico.

L. g. Inherente a muchos enfermedades infecciosas: Salmonellia, Listeriosis, Staphylococcus, OSP, Diarrea viral, coriomeningitis linfocítica, Coccidiosis, Helmintiasis, Micosa, Lesiones Ticky, etc. Hay carro latente (especialmente en ratas) Bacterias y virus patógenos, formas ocultas de enfermedades infecciosas de la pequeña etiología estudiada. Algunas infecciones L. g. son la zaoantroponosis. Prevención de la enfermedad L. g. Basado en la observancia estricta de las reglas sanitarias e higiénicas, la máxima desinfección. ambiente (Locales, aire, equipo, alimentación, ropa de cama, etc.). En algunos países, se organiza la producción. L. g. No específico factores patógenosLos llamados animales SPF (ver animales estériles). La creciente necesidad de B. L. g. determinó el nacimiento de la ciencia sobre L. g.que incluye genética, ecología, morfología, fisiología, patología y otras secciones, así como la cría de animales de laboratorio especial. En muchos países (EE. UU., Gran Bretaña, Alemania, Francia, la URSS, etc.) hay centros científicos relevantes, cuya coordinación es llevada a cabo por el Comité Internacional de Ciencia sobre L. g. (Yclas).

Literatura:
Bashenina N. V., Directrices para el mantenimiento y la cría de nuevos roedores en la práctica del laboratorio. M., 1975;
Reglas sanitarias en el dispositivo, equipo y mantenimiento de la clínica biológica experimental (VIVARIS), M., 1973.

Publicaciones sobre el tema:

  1. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2018-8-4-207-2018-8-4-207-217.
  1. Makarova M.N., Rybakova A.V., Guschin ya.A., Sheduko V.V., Manykikyan a.a., Makarov V.G. Características anatomias-fisiológicas del tracto digestivo en humanos y animales de laboratorio // Boletín veterinario internacional. -2016, No. 1.C. 82-104.
  2. Voronin S.E., Makarova M.n., Kryon K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Hurones como animales de laboratorio // Boletín veterinario internacional. -2016, No. 2. -c. 103-116.
  3. Rybakova A.V., Kovaleva M.A., Kalatanova A.V., Vanatiev G.V., Makarova M.N. Cerdos enanos como objeto de investigación preclínica // Boletín veterinario internacional. -2016, No. 3. -c. 168-176.
  4. Voronin S.E., Makarova M.n., Kryon K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Ferecks como animales de laboratorio // materiales del IV-TH Congreso Internacional de Farmacología Veterinaria y Tolecólogo "Medicamentos efectivos y seguros en medicina veterinaria". San Petersburgo, 2016. -S. 46-47.
  5. Goryacheva M.A., Guschin ya.A., Kovaleva Ma, Makarova M.n. La posibilidad de usar clorhidrato de lidocaína y cloruro de potasio para la eutanasia de los conejos de laboratorio // Materiales del IV Congreso Internacional de Farmacología Veterinaria y Toxicólogos "Medicamentos eficientes y seguros en medicina veterinaria". San Petersburgo, 2016. -S. 55-56.
  6. Rybakova A.V., Makarova M.n. Contenido y cuidado adecuados de los cerdos enanos para exclusivos preclínicos // Materiales del IV Congreso Internacional de Farmacología Veterinaria y Toxicólogos "Medicamentos eficientes y seguros en medicina veterinaria". San Petersburgo, 2016. -S. 46-47.
  7. SUSOEV A.I., Avdeeva O.I., Manyikyan a.a.A., Sheduko V.V., Makarova M.n., Makarov V.G. La experiencia del estudio preclínico de oralizado. medicamentos En hámsters // resúmenes de informes VII Conferencia científica y práctica " Problemas reales Estimaciones de seguridad de drogas ". Aplicación electrónica a la revista "Sechenovsky Bulletin". -2016, № 2 (24). -DE. 34-35.
  8. Kalatanova A.V., Avdeeva O.I., Makarova M.n., Manykikyan A.A., Sheduko V.V., Vanatiev G.V., Makarov V.G., Karlin M.V., Fijaritskaya. El uso de bolsas gravales de hámsters durante la investigación preclínica de medicamentos dispersos en la cavidad oral // farmacia. -2016, №7. -DE. 50-55.
  9. Rybakova A.V., Makarova M.N., Makarov V.G. El uso de conejos en estudios preclínicos // Boletín veterinario internacional. -2016, No. 4. -c. 102-106.
  10. Gaidai E.A., Makarova M.N. Uso de DEGGUS como animales de laboratorio // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 1. -c. 57-66.
  11. Rybakova A.V., Makarova M.n. Características zootécnicas del contenido de los cerdos enanos en Vivariums experimentales // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 1. -c. 66-74.
  12. Makarova M.n., Makarov V.G., Rybakova A.V., Zozulu O.K. Nutrición de animales de laboratorio. Raciones principales. Mensaje 1. // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 2. -C. 91-105.
  13. Makarova M.N., Makarov V.G., Shekunova E.V. Elegir el tipo de animales para evaluar la neurotoxicidad de sustancias farmacológicas // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 2. -C. 106-113.
  14. Rybakova A.V., Makarova M.n. El uso de gerblock para la investigación biomédica // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 2. -c. 117-124.
  15. BONEAREVA E.D., RYBAKOVA A.V., Makarova M.N. Características zootécnicas del contenido de los conejillos de indias en Vivariums experimentales // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 3. -C. 108-115.
  16. Guschin ya.A., Manykikyan a.a., Sheduko V.V., Makarova M.n., Makarov V.G. Anatomía comparativa El departamento superior del tracto gastrointestinal de animales experimentales y humanos // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 3. -c. 116-129.
  17. Makarova M.n., Makarov v.g. Nutrición de animales de laboratorio. Signos de déficit y exceso de proteínas, grasas, carbohidratos y vitaminas. Mensaje 2. // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 3. -c. 129-138.
  18. Makarova M.n., Rybakova A.V., Kilibekov K.YU. Requisitos para la iluminación en las instalaciones de ViVarium y guardería de animales de laboratorio // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 3. -c. 138-147.
  19. Rybakova A.V., Makarova M.n. El uso de hámsters en estudios biomédicos // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 3. -c. 148-157.
  20. Makarova M.n., Makarov V.G., Rybakova A.V. Nutrición de animales de laboratorio. Signos de déficit y exceso de compuestos minerales. Mensaje 3 // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 4. -C. 110-116.
  21. Manyikyan a.a., Zaicin K.O., Gushchin Ya.A., Makarova M.n., Makarov v.g. Morfología comparativa del hígado y vesícula biliar del hombre y animales de laboratorio // Boletín veterinario internacional. -2017, No. 4. -C. 117-129.
  22. Rybakova A.V., Makarova M.n. El uso de cobayas en estudios biomédicos // Boletín veterinario internacional. -2018, # 1. -c. 132-137.
  23. Guschin ya.A., Manykikyan a.a., Sheduko V.V., Makarova M.n., Makarov V.G. Morfología comparativa de la separación más baja del tracto gastrointestinal de animales experimentales y humanos // Boletín veterinario internacional. -2018, No. 1. - P. 138-150.
  24. Rudenko L., Kiseleva I., Krutikova E., Stepanova E., Rekstin A., Donina S., Pisareva M., Grigorieva E., Kryshen K., Muzhikyan A., Makarova M., gorrión, por ejemplo, Marie-Paule Gt. Justificación de la vacunación con vacunas de influenza atenuadas en vivo trivalentes o cuadrivalentes: Eficacia de la vacuna protectora en el modelo de hurón // PLOS ONE. - 2018. - P. 1-19.
  25. Rybakova A.V., Makarova M.n., Kukhachenko a.e., Vicario A., Ruffher F.-R. Requisitos y enfoques existentes para la dosificación de medicamentos con animales de laboratorio // Vedomosti Center Center Examen de usos médicos. - 2018, 8 (4). - P. 207-217.

Debido al hecho de que los virus pueden multiplicarse solo en células vivas, en las primeras etapas del desarrollo de la virología, el cultivo de virus en el cuerpo de los animales de laboratorio, especialmente crecido para realizar investigaciones sobre ellos.

Uso: 1) para detectar el virus en PM 2) de la liberación primaria del virus de PM 3) Acumulación de la masa viral 4) Mantener el virus en el laboratorio en el costo activo. 5) Titulación del virus 6) como objeto de prueba en pH 6) Obtención de sueros hiperimáticos. Los animales utilizados: ratones blancos (rabia, exuberante), ratas blancas (gripe por cerdo, b. Auesci), cobayas (rabia, exuberante, plaga carnívora). Conejos (rabia, mumbidas de conejos).

Requisitos para animales de laboratorio: el animal debe ser sensible a este virus; Su edad tiene gran importancia Para el cultivo de muchos virus. La mayoría de los virus son mejor crianza en el cuerpo de animales jóvenes e incluso recién nacidos; La sensibilidad estándar se logra mediante la selección de animales de cierta edad y lo mismo en peso. En términos de sensibilidad, los llamados animales lineales obtenidos como resultado de un cruce cercano durante varias generaciones tienen el más alto nivel; Los animales de laboratorio deben ser saludables. Los animales que ingresan a los laboratorios virológicos vivalium deben ser traídos de un próspero. enfermedades infecciosas Granjas. Están contenidos en cuarentena y la observación clínica de plomo. En presencia de la enfermedad, son destruidos.

Los animales se colocan de modo que, por un lado, el funcionamiento de todos los sistemas de organismo dentro de los límites. norma fisiológicaPor otro lado, se excluye la reparación mutua y la difusión de la infección más allá de Vivaria. Para animales de diferentes especies se aplican. diferentes métodos Etiqueta individual. Para animales grandes y pollos usan etiquetas de metal con un número estampado. Cuando se usa en el experimento, un pequeño grupo de animales y bajo a corto plazo se puede cortar los signos de lana en la parte posterior, las caderas. La etiqueta de ratones blancos, las ratas blancas se pueden llevar a cabo mediante la amputación de los dedos individuales en las extremidades delanteras o traseras. A menudo use el método para aplicar manchas de colores en lana no comprimida. Infección de animales de laboratorio.

  • 1. De vuelta por vía subcutánea.
  • 2. Intradermode - tacón
  • 3. Cadera intramuscular
  • 4. Intravneamente - en la cola (Pre-Fustomev agua caliente y cambiando)
  • 5. Intranosally - gota en la nariz (prevé la anestesia débil para advertirlos en estornudos)
  • 6. Interocerebral: el cráneo está perforadamente perforado por una aguja, no presione, la gota se va a la misma.

Todas las superficies están pre-lubricadas con alcohol yodado.

Arrastrando un laboratorio. Animales (en el ejemplo de un ratón blanco)

  • - La piel está manchada con desinfector.
  • - Linea Alba está cortada.
  • - Apertura del esternón: toman pulmones y se colocan en un tubo de ensayo número 1
  • - Apertura cavidad abdominal - El hígado, el bazo, los riñones se toman y se colocan en un tubo de ensayo número 2.
  • - Se realiza una apertura de la caja craneal. Se toma el cerebro, hay cortes de 4 capas, las piezas se colocan en el papel de filtro y se realizan impresiones en el vidrio.

GOST 33216-2014

Grupo T58.

Estándar interestatal

Guía de interés de laboratorio

Directrices para alojamiento y cuidado de animales. Disposiciones específicas de especies para roedores de laboratorio y conejos.


ISS 13.020.01

Fecha de introducción 2016-07-01.

Prefacio

Objetivos, principios básicos y el procedimiento principal para trabajar en la estandarización interestatal instalada en GOST 1.0-92 "Sistema de normalización interestatal. Disposiciones básicas" y GOST 1.2-2009 "Sistema de normalización interestatal. Estándares de la interestatal, reglas, recomendaciones sobre la estandarización interestatal. Reglas de desarrollo , adopción, aplicaciones, actualizaciones y cancelación "

Información sobre estándar

1 Desarrollado por una asociación no comercial "Asociación de especialistas en animales de laboratorio" (RUS-LASA)

2 Presentado por el Comité Técnico de Normalización de la Seguridad de la TC 339 "de materias primas, materiales y sustancias"

3 Adoptado por el Consejo Interestatal de Normalización, Metrología y Certificación (Protocolo del 22 de diciembre de 2014 N 73-P)

Nombre breve del país.
MK (ISO 3166) 004-97

Nombre abreviado de la Autoridad Nacional de Normalización

Azerbaiyán

Azstandard

Bielorrusia

Classtandart de la República de Bielorrusia

Kazajstán

GOSSTÁSTIO DE LA REPÚBLICA DE KAZAKHSTAN

Kirguistán

Kirgyzstandart

Moldavia

Estándar Moldavia

Rusia

RosStandard.

4 Por el Orden de la Agencia Federal para la Regulación Técnica y Metrología del 9 de noviembre de 2015, N 1733-ST Estándar interestatal GOST 33216-2014 se introdujo como una norma nacional de la Federación de Rusia del 1 de julio de 2016.

5 Esta norma cumple con el documento internacional de la Convención Europea para la protección de los animales de vertebrados utilizados para fines experimentales y de otro tipo científica (ETS N 123) * (Convención europea sobre la protección de los animales de moda de VerteB utilizados en experimentos y otros fines científicos (ETS N 123)).
________________
* Acceso a documentos internacionales y extranjeros mencionados aquí y luego en el texto, puede hacer clic en el enlace al sitio http://shop.cntd.ru. - Nota Fabricante de la base de datos.


Traducción S. de idioma ingles (En).

El grado de conformidad no es equivalente (NEQ)

6 introducido por primera vez


La información sobre los cambios a esta norma se publica en el indicador anual de información "Normas nacionales", y el texto de las enmiendas y enmiendas se encuentran en el indicador de información mensual "Normas Nacionales". En caso de revisión (reemplazo) o la cancelación de esta norma, la notificación apropiada se publicará en el Índice de Información Mensual de las Normas Nacionales. La información relevante, la notificación y los textos también se colocan en sistema de informacion Uso general: en el sitio web oficial de la Agencia Federal para la Regulación Técnica y Metrología en Internet.

Introducción

Introducción

Los Estados miembros del Consejo de Europa decidieron que su objetivo es proteger a los animales utilizados con fines científicos experimentales y de otro tipo, lo que es una garantía de que se minimizarán el dolor, el sufrimiento, la angustia o el daño que tienen largos efectos de salud resultantes de los procedimientos.

El resultado fue la firma y la ratificación por parte de la mayoría de los Estados miembros del Consejo de Europa (toda la Unión Europea, así como Macedonia, Noruega, Serbia, el Reino Unido de Gran Bretaña e Irlanda del Norte, Suiza) de la Convención sobre la Protección de los Vertebrados , utilizado para experimentos u otros fines científicos, ETS N 123, Estrasburgo, 18 de marzo de 1986 (en adelante, convención).

El Convenio extiende su efecto en todo tipo de actividades relacionadas con el uso de animales de laboratorio: alojamiento y cuidado de ellos, realizando experimentos, asesinatos humanos (eutanasia), que emite permisos para el uso de animales en procedimientos, controles sobre criadores, proveedores y usuarios. , capacitación y personal de formación profesional, contabilidad estadística. La Convención tiene dos aplicaciones técnicas que contienen orientación sobre el contenido y el cuidado de los animales de laboratorio (Apéndice A) y las tablas para presentar información estadística sobre el número de animales utilizados con fines científicos (Apéndice B).

Al menos una vez cada cinco años, la Convención está sujeta a la revisión en el curso de las consultas multilaterales de las Partes que realizan el Grupo de Trabajo, a fin de analizar el cumplimiento de sus disposiciones con circunstancias cambiantes y nuevos datos científicos. Como resultado, se decide revisar ciertas disposiciones de la Convención o la extensión de su acción.

Durante las consultas, las partes son atraídas por los Estados que no son miembros del Consejo de Europa, además de interactuar con organizaciones no estatales que representan los intereses de varios especialistas: investigadores, médicos veterinarios, criadores de animales de laboratorio, asociaciones de protección de animales, expertos en el campo de las ciencias de los animales, representantes de productos farmacéuticos y otros que están presentes en las colecciones del grupo de trabajo como observadores.

En 1998, las partes que firmaron la Convención decidieron revisar el Anexo A. Grupo de trabajo Terminó la revisión del Apéndice A en la octava reunión (22 al 24 de septiembre de 2004) y le proporcionó la aprobación por consulta multilateral de las Partes. El 15 de junio de 2006, la cuarta consulta multilateral de las Partes en la Convención Europea sobre la protección de los vertebrados utilizados en experimentos y otros fines científicos adoptó el Apéndice revisado a la Convención. Esta aplicación establece los requisitos para el contenido y el cuidado de los animales basados \u200b\u200ben conocimientos modernos y la práctica adecuada. Explica y complementa las principales disposiciones del artículo 5 de la Convención. El propósito de este Anexo - Ayuda agencias gubernamentales, instituciones e individuos en su deseo de lograr los objetivos del Consejo de Europa a este respecto.

El jefe de "parte general" es una guía para la colocación, el mantenimiento y el cuidado de todos los animales utilizados en fines experimentales y de otro tipo científica. Las recomendaciones adicionales para las especies más utilizadas se dan en las secciones relevantes. En ausencia de información en esta sección, se deben seguir los requisitos dados en la parte total.

Las secciones vidospecíficas se compilan sobre la base de las recomendaciones de grupos de expertos en el trabajo con roedores, conejos, perros, gatos, hurones, primates no técnicos, animales agrícolas, mini-cerdos, aves, anfibios, reptiles y peces. Los grupos de expertos proporcionaron información científica y práctica adicional sobre la base de los cuales se dieron recomendaciones.

El Apéndice A incluye consejos sobre el diseño de las instalaciones interiores (VIVIVA), así como las recomendaciones y directrices para el cumplimiento de los requisitos de la Convención. Sin embargo, los estándares recomendados de las instalaciones son mínimamente admisibles. En algunos casos, se puede requerir su aumento, ya que las necesidades micropuronales individuales pueden diferir significativamente dependiendo del tipo de animales, su edad, condición física, densidad de contenido, propósitos de contenido animal, por ejemplo, para dilución o experimentos, así como la duración de su contenido.

La solicitud revisada entró en vigor 12 meses después de su adopción, el 15 de junio de 2007.

Esta norma se ha desarrollado teniendo en cuenta las regulaciones de la Convención Europea sobre la protección de los vértigos utilizados en experimentos y otros fines científicos (ETS n 123), en particular el Anexo A y el Artículo 5 de la Convención.

La guía de GOST "para la guía de atención de laboratorio y la guía de cuidado" se basa e incluye todas las disposiciones del Anexo A de la Convención sobre la protección de los vertebrados utilizados en experimentos y otros fines científicos, y por lo tanto, estas normas están armonizadas con los requisitos europeos en estas áreas. .

1 área de uso

Esta norma establece requisitos generales para la colocación, el mantenimiento y el cuidado de los roedores de laboratorio y los conejos utilizados en fines científicos educativos, experimentales y de otro tipo.

2 referencias reglamentarias

Esta norma utiliza una referencia regulatoria a la siguiente norma:

Gost 33215-2014 Guía de contenido y cuidado para animales de laboratorio. Reglas de equipos para locales y procedimientos de organización.

Nota: cuando se utiliza esta norma, es recomendable verificar la acción de las normas de referencia en el sistema de información pública, en el sitio web oficial de la Agencia Federal para la Regulación Técnica y Metrología en Internet o en la señal de información anual de las normas nacionales, que es Publicado al 1 de enero del año en curso, y sobre temas del puntero de la información mensual "Normas Nacionales" para el año en curso. Si se reemplaza el estándar de referencia (cambiado), cuando se usa este estándar debe guiarse al reemplazar el estándar (modificado). Si el estándar de referencia se cancela sin reemplazo, la posición en la que se le da la referencia se aplica en una parte que no afecta este enlace.

3 Términos y Definiciones

Este estándar aplica términos con las definiciones apropiadas, según GOST 33215-2014.

4 Requisitos de contención de roedores VioSpecíficos

4.1 Introducción

4.1.1 Ratones

El ratón de laboratorio se retiró del ratón de la casa de las salvajes (Mus Musculus), el animal de norny y la escalada, que es predominantemente un estilo de vida nocturno y construyendo un nido para regular las condiciones de los microcers, el refugio y la reproducción. Los ratones están muy bien cerrados, pero cruza a regañadientes espacios al aire libre y prefieren mantenerse más cerca de los refugios: paredes u otros objetos. El tipo de organización social de las comunidades de ratones varía y se determina principalmente por la densidad de la población. Los machos reproductivos activos tienen un comportamiento territorial pronunciado, las hembras embarazadas y de enfermería pueden mostrar la agresión al proteger los nidos. Dado que los ratones, especialmente los albinos, tienen una mala vista, se basan principalmente en el olor y dejan las etiquetas urinarias en el hábitat. Los ratones también tienen una audición muy afilada, son sensibles al ultrasonido. Hay diferencias significativas en el comportamiento de los ratones de diferentes líneas.

4.1.2 Ratas

La rata de laboratorio se eliminó de la rata gris (Rattus Norvegicus). Las ratas son animales sociales, evitan espacios abiertos y usan etiquetas urinarias para marcar el territorio. El olor y el rumores se han desarrollado con fuerza, mientras que las ratas son particularmente sensibles a la ecografía; La visión del día es débil, pero algunas líneas pigmentadas tienen una visión suficientemente afilada con la falta de luz. RAT Albinos Evita la iluminación de más de 25 lujos (LC). La actividad de las ratas se eleva en las horas de la noche. Los animales jóvenes son muy curiosos y, a menudo, organizan juegos sociales.

4.1.3 Gestjal

Piedra arenisca mongol o mediodía (Meriones SP.) - Animal social liderando principalmente la vida nocturna, pero en condiciones de laboratorio, preservando la actividad y la luz del día. En la naturaleza, los orificios de excavación de Gerbils con las entradas de túnel para proteger contra los depredadores y, por lo tanto, en las condiciones de laboratorio, a menudo demuestran una excavación estereotípica si no proporcionan condiciones para cavar agujeros.

4.1.4 Hamyachki

Ancestro salvaje del hámster de laboratorio - Mesocricetus sp. - Animal liderando principalmente el estilo de vida solitario. Las hembras de Hamster son más grandes y agresivas de los hombres y pueden lastimar a su pareja. Los hámsters a menudo son adecuados en una celda, un asiento de inodoro separado y etiqueta el territorio de las glándulas de las glándulas en los lados del cuerpo. Las hembras del hámster a menudo comen jóvenes para reducir la cantidad de descendencia.

4.1.5 Guinea Pigs

Los cerdos de orientación silvestre (Cavia Porcellus) son sociales, moviendo activamente roedores que nunca cavan agujeros, sino que se asientan en refugios o usan los agujeros de otras personas. Los machos adultos pueden ser agresivos en relación entre sí, pero en general, la agresión rara vez se observa. Los conejillos de indias tienden a excavarse si se escucha un sonido inesperado. Pueden tener un grupo completo para apresurarse en respuesta a un movimiento afilado e inesperado. Los conejillos de indias son especialmente sensibles a los movimientos de un lugar a otro y luego pueden ser lanzados por treinta y más minutos.

4.2 Monitoreo del hábitat

4.2.1 Ventilación - Según GOST 33215-2014, p.4.1.

4.2.2 Temperatura

Los roedores deben mantenerse a una temperatura de 20 ° C a 24ºC. Con el contenido de grupo, la temperatura en las células con un fondo continuo es más probable que sea más alto que la sala, e incluso con ventilación de bienestar, puede excederla a 6ºC. El material para la construcción de nidos y casas permite a los animales controlar independientemente el microclima. Atención especial Debe pagarse para mantener la temperatura en los sistemas de barrera y donde se contengan animales desprovistos de cobertura lanuda.

4.2.3 Humedad

La humedad relativa en las instalaciones para el contenido de los roedores debe mantenerse en el rango del 45% al \u200b\u200b65%. Las excepciones son los jerbos que deben contener en un 35-55% de humedad relativa.

4.2.4 Iluminación

La iluminación celular debe ser baja. Los bastidores de células deben tener un estante superior oscuro para reducir el riesgo de degeneración de la retina en animales, especialmente los albinos contenidos en las células del nivel superior. Para observar a los animales en la oscuridad durante el período de su fase activa, puede usar una luz roja que son roedores invisibles.

4.2.5 ruido

Dado que los roedores son muy sensibles a la ecografía y usándolo para comunicarse, es necesario minimizar las señales de sonido extranjeras en este rango. Ultrasonido (más de 20 kHz), publicado por equipos de laboratorio, que incluyen grúas de goteo, ruedas de carretas y monitores de computadora, pueden causar comportamientos anormales y trastornos del ciclo reproductivo en animales. Se recomienda medir periódicamente el nivel de ruido en la sala para el contenido de los animales en un amplio rango de frecuencia y durante mucho tiempo.

4.2.6 Requisitos para sistemas de alarma: según GOST 33215-2014, p.4.6.

4.3 Las condiciones y los factores que afectan la salud animal se dan en GOST 33215-2014, P.6.1 y 6.4.

4.4.1 Alojamiento

Los animales sociales deben ser contenidos por grupos permanentes y armoniosos, aunque en algunos casos, por ejemplo, con el contenido conjunto de hombres adultos, hámsters o gerblock, el contenido de grupo es problemático debido a la agresión intraespecífica.

Si existe un riesgo de agresión o lesiones, los animales pueden ser guardados individualmente. Deben evitarse la interrupción de grupos estables y armoniosos, ya que puede causar estrés muy fuerte en los animales.

4.4.2 Enriquecimiento de habas

Las células y los materiales utilizados para enriquecer el medio deben permitir que los animales muestren un comportamiento normal y reduzcan la probabilidad de situaciones de conflicto.

Calentados y materiales para crear nidos, así como refugios: componentes importantes del hábitat de los roedores utilizados para la cría, manteniendo una colonia o experimento. Deben estar presentes en la jaula constantemente, excepto cuando esto contradice razones veterinarias o viole el bienestar animal. Si es necesario eliminar tales materiales de las células, es necesario coordinarlo con personal para cuidar a los animales y una persona competente que tiene poderes de asesoramiento sobre el bienestar de los animales.

El material para la construcción de nidos debe permitir que los animales creen un zócalo cerrado completo. En ausencia de tal oportunidad, es necesario proporcionar animales a la casa de anidación. El material subrayado debe absorber la orina y usar animales para dejar las etiquetas urinarias. Los materiales para crear nidos son necesarios por ratones, ratas, hámsters y arenas, ya que les permiten crear un microenvironio adecuado para la recreación y la reproducción. Las casas de anidación y otros refugios son importantes para los cobayas, hámsters y ratas.

Los conejillos de indias siempre deben estar provistos de materiales como el heno para que puedan masticarlo y esconderse en ella.

Los palillos y masticadores de madera se pueden utilizar como enriquecimiento del hábitat de todos los roedores de laboratorio.

Los representantes de la mayoría de los tipos de roedores están tratando de dividir la célula en varias zonas, para el consumo y almacenamiento de la alimentación, la recreación y la micción. Una etiqueta de fundición se puede basar en esta separación, y no barrera físicaPero, sin embargo, las barreras parciales pueden ser útiles, ya que permiten a los animales iniciar contactos con sus vecinos o, por el contrario, evitarlos. Para complicar el medio ambiente, es muy recomendable usar objetos adicionales. Los tubos, cajas y bastidores para escalar son ejemplos de estructuras utilizadas con éxito para roedores. Además, le permiten aumentar el área útil de la celda.

Los gerbos necesitan más espacio que los roedores de otras especies. El área celular debe permitirles lidiar con la construcción y / o usar las bolsas de tamaño adecuado. Globankam necesitaba una capa gruesa iluminada para excavar, construir nidos y Ruggs, cuya longitud debería alcanzar los 20 cm.

Debe proporcionarse para usar células translúcidas o ligeramente pintadas. buena reseña Para observación de animales sin ninguna preocupación.

Los mismos principios con respecto a la calidad y la cantidad de espacio, los materiales para el enriquecimiento del medio ambiente y otros requisitos establecidos en este documento se deben aplicar a los sistemas de barrera, por ejemplo, a los sistemas de células ventiladas individualmente (IRC), aunque sus diseños pueden requerir Cambios en la implementación de los principios anteriores.

4.4.3 Cercado: tamaños y estructura de piso.

Las células deben estar hechas de materiales que sean fáciles de limpiar, y su diseño es garantizar observaciones sin causar ansiedad a los animales.

Tan pronto como los animales jóvenes se activen, necesitan proporcionalmente más espacio que las personas adultas.

4.4.3.1 Tamaños

En esta y las tablas posteriores, lo que representa las recomendaciones sobre el contenido de los roedores, la "altura de la célula" significa la distancia entre el piso y la parte superior de la célula, y más del 50% del área de células mínimas debe tener una altura dada a la Colocación de materiales allí para crear condiciones ricas en estímulos (enriquecimiento del medio ambiente).

Al planificar procedimientos, es necesario tener en cuenta la posibilidad de un crecimiento animal, para proporcionarles suficiente espacio de vida (como se describe en detalle en las Tablas 1-5) durante todo el período del estudio.

4.4.3.2 Estructura del piso

Piso sólido con material de subrayado o piso con perforación, preferiblemente enrejado o pisos de malla. En el caso de usar células con enrejado o pisos de animales de malla, es necesario si no contradice las condiciones experimentales, para proporcionar sitios de pisos sólidos o cubiertos para descansar. Para los cobayas, la alternativa puede ser transversal. Se permite no usar material subtenitorio al hacer animales.

Los pisos de malla pueden causar lesiones graves, por lo que debe verificar con cuidado la presencia de partes mal fijadas y protuberancias afiladas y eliminarlas de manera oportuna.

Hembras en tiempo tarde El embarazo, durante el parto y la alimentación, los Cachorros deben contenirse exclusivamente en células con un fondo de fondo sólido y subrayado.

TABLA 1 - Ratón: Tamaños mínimos de células (cercas)

Min. Tamaño, ver

Área / animal, ver

Min. Altura, ver

En colonia y durante los experimentos.

Cría

Para parejas monógamas (animales sobre casos o animales) o tríadas (consolidados). Por cada extra. Las hembras con basura deben añadirse 180 cm.

En la colonia del criador *

Células de superficie de piso 950 cm.

Células de superficie de piso 1500 cm.

* Dentro de un corto período después de la excomunión, el ratón puede estar contenido en grupos de mayor densidad, sujeto a su ubicación en células grandes Con un medio suficientemente enriquecido, si no hay signos de violación de su bienestar, por ejemplo: fortalecer la agresión, el aumento de la morbilidad y la mortalidad, así como la aparición del estereotipo y otras violaciones del comportamiento normal, la pérdida de peso u otras reacciones fisiológicas o de comportamiento. causado por el estrés.


TABLA 2 - RATS: Tamaños mínimos de células (cercas)

Min. Tamaño, ver

Área / animal, ver

Min. Altura, ver

En la colonia y durante los experimentos *

Cría

Mujer con basura; Por cada adicional. Rata para adultos debe añadirse 400 cm.

En la colonia del criador **

Jaula - 1500 cm

En la colonia del criador **

Jaula - 2500 cm

* En una larga investigación de animales debe garantizarse mediante células del tamaño apropiado, lo que les permite contenerlos grupos sociales. Dado que en tales estudios es difícil predecir la densidad de la colonia al final del experimento, los casos de contenido animal en condiciones con un área más pequeña por animal, que se indica anteriormente. En este caso, se debe dar prioridad a la constancia del grupo.

** Durante el corto período, después de conducir de la madre de Roushite puede estar contenida en grupos de mayor densidad, siempre que se coloquen en células grandes con un medio suficientemente enriquecido, si no hay signos de violaciones de su bienestar, como aumentar Agresión, aumentando la incidencia y la mortalidad, así como la aparición del estereotipo y otras violaciones del comportamiento normal, la pérdida de peso u otras reacciones fisiológicas o de comportamiento causadas por el estrés.


Tabla 3 - Guantes: Tamaños de células mínimas (cercas)

Min. Tamaño, ver

Área / animal, ver

Min. Altura, ver

En la colonia (en stock) y durante los experimentos.

Cría

Para parejas monógamas o tríadas con basura.


TABLA 4 - Hamsters: Tamaños mínimos de células (cercas)

Min. Tamaño, ver

Área / animal, ver

Min. Altura, ver

En colonia y durante los experimentos.

Cría

Hembras o parejas monógamas con basura.

En la colonia del criador *

* Durante el corto período después de Weolate, los hámsters pueden estar contenidos en grupos de mayor densidad, sujeto a su colocación en células grandes con un medio suficientemente enriquecido, si no hay signos de violación de su bienestar, por ejemplo: mayor agresión, aumentando La morbilidad y la mortalidad, así como los estereotipos de ocurrencia y otras violaciones del comportamiento normal, la pérdida de peso u otras reacciones fisiológicas o de comportamiento causadas por el estrés.


TABLA 5 - COJERTOS DE GUINEA: Tamaños mínimos de células (cercas)

Min. Tamaño, ver

Área / animal, ver

Min. Altura, ver

En colonia y durante los experimentos.

Cría

Pares con basura; Por cada extra. Las hembras deben ser agregadas 1000 cm.

4.4.4 Alimentación - Según GOST 33215-2014, p.6.6.

4.4.5 Intención - Según GOST 33215-2014, p.6.7.

4.4.6 Material de la subestatria, anidamiento y absorbente: según GOST 33215-2014, p.6.8.

4.4.7 Células de limpieza.

A pesar de la necesidad de mantener altos estándares higiénicos, puede ser apropiado dejar a los animales parte de la cantidad de etiquetas de fundición. Debe evitarse la limpieza demasiado frecuente de las células, especialmente cuando el contenido de las hembras embarazadas y las hembras con descendencia, ya que la ansiedad causada puede causar la descendencia alimentaria de la hembra o violación de su comportamiento materno.

La decisión sobre la frecuencia de limpieza celular debe tomarse teniendo en cuenta el tipo de célula utilizada, el tipo de animales, la densidad de la colonia, la capacidad de los sistemas de ventilación para apoyar. calidad requerida Aire interior.

4.4.8 Manejo de animales.

Debería esforzarse por causar animales de ansiedad mínima y no violar las condiciones de su contenido, lo que es especialmente importante para los hámsters.

4.4.9 Eutanasia - Según GOST 33215-2014, p.6.11.

4.4.10 Contabilidad - Según GOST 33215-2014, pág. 6.12.

4.4.11 Identificación - Según GOST 33215-2014, p.6.13.

5 Requisitos de contenido de conejo VioSpecíficos

5.1 Introducción

En condiciones naturales, los conejos (ORATORATORACOLAGUS CUNICULI) viven con colonias. Cuando se mantenga en cautiverio, deben proporcionar suficiente espacio con un medio enriquecido, la falta de lo que puede llevar a la pérdida de la actividad motora normal y la aparición de anomalías esqueléticas.

5.2 Monitoreo del hábitat

5.2.1 Ventilación - Según GOST 33215-2014, p.4.1.

5.2.2 Temperatura

Los conejos deben mantenerse a una temperatura de 15 ° C a 21ºC. La temperatura en las cercas con un fondo continuo, donde está contenido el grupo de conejos, la mayoría de las veces sucede por encima de la habitación e incluso con un sistema de ventilación de bien trabajo puede excederla con 6 ° C.

El material para la estructura de los nidos y / o las casas le dan a los animales la capacidad de controlar independientemente el microclima. Se debe prestar especial atención al testimonio de la temperatura en sistemas de barrera.

5.2.3 Humedad

La humedad relativa del aire en interiores para el contenido de los conejos no debe estar por debajo del 45%.

5.4.1 Alojamiento

Los conejos jóvenes y las hembras deben mantenerse en grupos armoniosos. El contenido único está permitido si sus razones son el bienestar de las consideraciones animales o veterinarias. La decisión sobre la posibilidad de un contenido animal único en fines experimentales debe tomarse después de consultar al personal de atención animal y una persona responsable que tenga poderes asesores sobre el estado físico y mental de los animales. Los machos adultos no registrados pueden mostrar agresión territorial, por lo que no deben mantenerse junto con otros machos no almacenados. Para el contenido de grupo de hembras jóvenes y adultas de conejos, bolígrafos al aire libre con un medio rico de hábitat están perfectamente probados. Sin embargo, debe monitorear de cerca al grupo para prevenir la posible agresión. Ideal para el contenido grupal de un colchón único, viviendo juntos desde el momento de superarlos de la madre. En los casos en que el contenido del grupo es imposible, los animales deben ser lo más cercanos posible entre sí, dentro de la visibilidad.

5.4.2 Enriquecimiento del hábitat.

Los materiales adecuados para enriquecer el hábitat de los conejos son piensos gruesos, bloques de heno o palos de masticación, así como estructuras que permiten esconderse.

En bolígrafos de piso para contenido de grupo, colocación de barreras de separación y estructuras de refugio, permitiendo que los animales sean observen desde allí. Cuando se reproducen conejos, es necesario proporcionar material de anidación y cajas de maternidad.

5.4.3 Cercado: Tamaños de suelo y estructura.

La ventaja debe ser rectificada por células rectangulares en las que debe haber un área elevada, que no exceda el 40% del área total del piso. El estante debe permitir que los animales se sienten y se acuesten, y también se mueven libremente debajo de él. Aunque la altura celular debe permitir que el conejo se siente sin tocar las puntas de las orejas elevadas de techo, no se presenta el mismo requisito para el área elevada. Si hay suficientes bases científicas o veterinarias para no colocar tal estante en la célula, entonces el área celular debe ser un 33% más para un conejo y 60% para dos conejos. Donde sea posible, los conejos deben mantenerse en los bolígrafos.

5.4.3.1 Tamaños

TABLA 6 - Conejos mayores de 10 semanas: cercado mínimo

Min. Área para 1-2 socialmente amigo adecuado Amigo de animales, ver

Min. Altura, ver

La TABLA 6 Los datos también son también a las células y a los cerramientos. Debe haber un patio de recaudación en las células (ver Tabla 9). Los Wolters deben estar equipados con barreras divisorias que permiten a los animales iniciar contactos sociales O evítelos. Para cada uno del 3º al 6º Conejo, se deben agregar a 3000 cm al voltar de Voller, y para cada subsiguiente - 2500 cm.

Tabla 7 - Hembra de conejos con jóvenes: tamaños de esgrima mínima

Peso femenino, kg

Min. Tamaño, ver

Espacio adicional para nidos, ver

Min. Altura, ver

En un mínimo de 3 a 4 días antes del cumpleaños, la hembra debe proporcionar un compartimento separado o una caja de maternidad en la que pueda construir un nido. Es mejor si la caja de maternidad se colocará fuera del contenido constante de la hembra. También se debe proporcionar una paja u otro material para la disposición del nido. La cerca para la cría de conejos debe organizarse de tal manera que la hembra pueda alejarse de sus conejos crecidos, capaz de dejar el nido, en un compartimento, refugio o en una plataforma elevada. Después de servir de la madre de los conejos de una basura, debe mantenerse el mayor tiempo posible en la misma cerca donde nacieron.

En la valla de cría, se le permite contener hasta ocho matices únicas hasta que logren la edad de siete semanas. Se pueden mantener cinco matones individuales de 8 a 10 semanas en el área de cercado mínimo permisible.


Tabla 8 - Conejos menores de 10 semanas de edad: tamaño mínimo de cercas

Edad, semana

Min. Tamaño de celda, cm

Min. Área / animal, ver

Min. Altura, ver

TABLA 8 Los datos también son también a las células, y a los recintos. Los Wolters deben estar equipados con barreras divisorias que permitan a los animales iniciar contactos sociales o evitarlos. Después de servir de la madre, las matices simples deben contener el mayor tiempo posible en la misma cerca donde nacieron.


Tabla 9 - Conejos mayores de 10 semanas de edad: las dimensiones óptimas del sitio elevado en las cercas que tienen las dimensiones especificadas en la Tabla 6.

Edad, semana

Tamaño óptimo de la plataforma, SMSM

La altura óptima del piso de la celda del piso, vea

Para proveer uso apropiado El sitio elevado y la cerca en general en la Tabla 9 son las dimensiones y altura óptimas en las que se encuentra la plataforma. Se deja que una desviación se deja al 10% hacia arriba o aumentando los tamaños especificados. Si hay suficientes bases científicas o veterinarias para no colocar tal estante en la cerca, entonces el área de cercado debe ser un 33% más para un conejo y en un 60%, para dos conejos para garantizar su espacio para la actividad motora normal y la capacidad de evitar el contacto con individuo dominante.

Para los conejos, no mayores de 10 semanas de edad, las dimensiones óptimas de la plataforma elevada son de 55 cm25 cm, y su altura sobre el piso debe permitir que los animales usen la plataforma y el espacio debajo.

5.4.3.2 Células de fondo

No utilice cercas con pisos de celosía sin proporcionar una parcela suficiente para un resto de todos los animales. Los pisos sólidos con materiales por suelo radiante o pisos de inundación son mejores que la malla o la malla.
ISS 13.020.01

Palabras clave: animales de laboratorio, roedores, conejos.



Texto de documento electrónico
codex JSC preparado y perforado por:
edición oficial
M.: StandInForm, 2016