animale de laborator. Animale de laborator, scopuri și metode de utilizare a acestora în virologie. Termeni și definiții

În activitatea de diagnosticare a laboratoarelor bacteriologice, de multe ori trebuie să recurgem la infectarea așa-numitelor animale de laborator sau de experiment. Cel mai adesea, în practica de zi cu zi, animalele mici și cele mai ieftine sunt folosite în acest scop: șoareci și șobolani albi, cobai, iepuri și porumbei și găini. Câini și pisici mai puțin folosiți, chiar mai rar - tipuri diferite animale de fermă. Scopul metodelor de cercetare biologică este de a determina patogenitatea sau gradul de virulență al materialului studiat, de a izola culturi pure de microbi din material, de a separa microorganismele patogene dintr-un amestec cu specii saprofite etc. Animalele de laborator sunt, de asemenea, utilizate pe scară largă în practica serologică: porcușori de Guineea- pentru a obține complement, iepuri (oaie, viței) - la fabricarea diferitelor seruri aglutinante, hemolizină, eritrocite etc.. Pentru fabricarea mediilor nutritive speciale, din animale se obțin sânge, ser, diverse organe, țesuturi etc.. În plus, animalele de laborator sunt utilizate pe scară largă în determinarea calităților medicamentelor biologice și experimentale, funcționează bine ca și științific și chimioterapeutic. Animalele de laborator servesc, de asemenea, la diagnosticarea anumitor boli infecțioase, la simularea proceselor infecțioase acute și cronice experimentale, la stabilirea virulenței și toxigenității tulpinilor microbiene aflate în studiu, la determinarea activității vaccinurilor preparate și la examinarea lor pentru a verifica inofensivitatea.

Laboratoarele bacteriologice pentru munca zilnica cresc de obicei animale de laborator in pepiniere special organizate in acest scop. Acest lucru face posibilă obținerea întotdeauna a unei cantități suficiente de material experimental de calitate dovedită și impecabilă. Dacă animalele nu sunt crescute, ci păstrate doar într-un laborator, atunci camera pentru ele se numește vivarium. Noi loturi de animale sunt achiziționate de la pepiniere. Condițiile de păstrare și hrănire în aceste unități sunt aproape aceleași, prin urmare, în materialul de mai jos nu va exista nicio diferențiere între structurile indicate ale laboratorului.

Scurte informații despre întreținerea, creșterea, hrănirea și bolile animalelor de laborator

Conținutul animalelor din pepiniere ar trebui, pe cât posibil, să corespundă condițiilor de existență a acestora în natură. Această prevedere se aplică în special animalelor sălbatice și păsărilor născute în sălbăticie (porumbei sălbatici, vrăbii, şoareci cenuşiiși șobolani). În condiții nefavorabile de păstrare și hrănire, aceste animale mor rapid în captivitate (în special vrăbii și șoareci cenușii). O condiție prealabilă pentru funcționarea cu succes a creșei este respectarea strictă a tuturor regulilor veterinare, sanitare, zootehnice și zooigiene. Acestea din urmă prevăd ținerea animalelor în cuști spațioase, luminoase, uscate și curate, în încăperi bine aerisite, cu temperatură normală, hrănire rațională și completă și măsuri preventive pentru prevenirea diferitelor boli. De mare importanță pentru pepinieră este o bună componență a producătorilor (masculi și femele).

Pepiniera (vivarium) ar trebui să aibă mai multe compartimente pentru păstrarea diferitelor tipuri de animale (iepuri, cobai, șoareci etc.). Structura vivariumului include:

departament pentru carantina si adaptarea animalelor nou sosite;

clinică biologică experimentală pentru păstrarea animalelor în experiment;

izolatoare pentru animalele suspectate de boli infecțioase și animalele evident bolnave, a căror distrugere este nedorită în condițiile experimentului;

camera experimentală (sau camera de manipulare), în care se efectuează cântărirea, termometria, infecția, vaccinarea animalelor, prelevarea de sânge și alte proceduri.

Dotarea sălii experimentale este determinată în fiecare caz specific de sarcinile și condițiile cercetării științifice care se desfășoară.

Secția de carantină, secția experimentală și camera de izolare pentru animalele infectate sunt amplasate în încăperi strict izolate una de cealaltă și de toate celelalte încăperi ale vivariumului.

În plus față de principalele unități structurale enumerate mai sus, vivariumul ar trebui să includă:

a) o bucătărie pentru furaje formată din două încăperi adiacente pentru prelucrarea și fabricarea furajelor cu acces independent pe coridor din fiecare cameră, o cămară cu lăzi special echipate (metalice sau tapițate în interior cu tablă) și frigidere pentru depozitarea furajelor;

b) secție de dezinfecție și spălare a 2 încăperi, unite printr-o autoclavă de tranziție sau o cameră cu căldură uscată.

Munca secției de dezinfecție și spălare este determinată de starea materialului care intră în procesare. Materialul infectat, cum ar fi cuști, așternuturi, hrănitori, este mai întâi dezinfectat și apoi supus curățării și spălării mecanice. Materialul care nu prezintă risc de infecție este mai întâi supus curățării mecanice, iar apoi (dacă este necesar) sterilizat.

Sala de spălat dintr-un vivarium organizat corespunzător are un tobog de gunoi pentru îndepărtarea apelor uzate și un stivuitor pentru livrarea materialelor și echipamentelor la vivarium.

Pe langa compartimentul de dezinfectare si spalare se afla un depozit de inventar curat (rezerva) cu custi, adapatoare, hranitoare etc., incaperi utilitare si o unitate sanitara (cabina de dus si toaleta) pentru personal.

În conformitate cu normele sanitare existente, vivariumul este situat într-o clădire separată sau la ultimul etaj al clădirii laboratorului. Când plasați un vivarium într-o clădire de laborator, acesta trebuie să fie complet izolat de toate celelalte încăperi.

Camera pentru ținerea animalelor de laborator trebuie să fie caldă, luminoasă și uscată, cu încălzire centrală, iluminat natural și artificial, alimentare forțată și ventilație prin evacuare, alimentare cu apă caldă și rece.

Podelele din vivarium sunt din material impermeabil, fără plinte, înclinate spre deschideri sau jgheaburi conectate la canalizare. Peretii sunt acoperiti cu gresie, tavanele si usile sunt vopsite cu vopsea in ulei.

animale de laborator animale crescute special pentru cercetare medicală, veterinară și biologică. la tradițional L. includ șoareci albi, șobolani albi, diferite tipuri de hamsteri, cobai, iepuri, pisici, câini; șobolani de bumbac, șobolani, gerbili, dihori, opossums, armadillos, maimuțe, miniporci, mini-măgari, marsupiale, pești, amfibieni și altele.Există un grup de păsări de laborator (găini, porumbei, prepelițe etc.). Cu exceptia L., animalele domestice sunt folosite în experimente, mai des oile și porcii. Producătorii de seruri imunitare și de diagnosticare sunt caii, măgarii, oile și iepurii. Multe nevertebrate (viermi, acarieni, insecte, cum ar fi Drosophila), precum și protozoare, își găsesc aplicații în experiment.

L. controlate de indicatori genetici, ecologici, morfologici si din motive de sanatate. Sunt crescuți în pepiniere speciale sau în vivarii la instituții științifice. Neliniar L. trebuie să aibă un grad ridicat de heterozigozitate. Cu cât populația închisă de animale neliniare crescute este mai mică, cu atât este mai mare gradul de creștere a consangvinizării în rândul acestora. Animalele homozigote (consangvinizate, liniare) crescute pe baza unei consangvinizări apropiate sunt din ce în ce mai folosite pentru cercetare (Fig. 1). Sunt cunoscute aproximativ 670 de linii de șoareci, 162 de linii de șobolani, 16 de linii de cobai, 66 de linii de hamsteri, 4 linii de gerbili și 7 linii de găini. Fiecare linie are propriile caracteristici în setul de gene, sensibilitate la diverse antigeneși factori de stres. Animalele liniare sunt monitorizate sistematic pentru homozigozitate. La reproducere L. obțineți 5 pui pe an de la șoareci, în medie 7 șoareci în fiecare așternut, respectiv, la șobolanii 5 și 7, la cobai 3 și 5, la iepurii 4 și 6. L.(vivariile) trebuie să fie extrem de igienice, spațioase, cu 10 schimburi de aer pe oră și umiditate a aerului de 5065%. 65 de șoareci adulți sau 240 tineri, 20100 șobolani, 3040 hamsteri, 1518 cobai, 34 iepuri sunt plasați pe 1 m2 de suprafață. Este permis să păstrați cel mult 15 șoareci, 10 șobolani, 5 hamsteri și cobai, 1 iepure într-o cușcă. Cel puțin 50% din suprafața vivariumului este alocată pentru încăperile utilitare. Pentru a evita schimbul de agenți infecțioși, nu este permisă păstrarea tipuri diferite L.în aceeași cameră sau cușcă. Șoarecii, șobolanii, cobaii și hamsterii sunt ținuți predominant în tăvi de plastic în formă de con, cu capace din plasă; iepuri, câini, maimuțe și păsări în cuști metalice. Tăvile și cuștile sunt așezate pe rafturi pe 16 etaje (Fig. 2), echipate cu adăpători automate și hrănitoare cu buncăr, bine spălate și dezinfectate cu mijloace fizice sau chimice înainte de utilizare. Băile de șoareci și șobolani sunt înlocuite săptămânal cu altele curate. Îndepărtarea lenjeriei de pat de pe ele și spălarea se efectuează într-o cameră specială dotată cu dispozitive sau mașini de spălat corespunzătoare. hrănit L. furaje naturale sau concentrate brichetate conform normelor elaborate de necesar zilnic. Furajul brichetat este plasat în alimentatoare timp de câteva zile. Servește L. personal instruit care a fost supus unui control medical.

L. mulți boli infecțioase: salmoneloză, listerioză, stafilococoză, variolă, diaree virală, coriomeningita limfocitara, coccidioze, helmintiază, micoze, leziuni transmise de căpușe, etc. Apare purtarea latentă (în special la șobolani) bacterii patogene si virusuri, forme ascunse de boli infectioase de etiologie putin studiata. Unele infecții L. sunt zooantroponoze. Prevenirea bolilor L. bazata pe respectarea stricta a regulilor sanitare si igienice, dezinfectare maxima mediu inconjurator(camere, aer, echipament, furaj, lenjerie de pat etc.). Producția este organizată în unele țări L. fara specific factori patogeni, așa-numitele animale SPF (vezi Animale sterile). Nevoia tot mai mare de L. a dat naștere științei de L., care include genetică, ecologie, morfologie, fiziologie, patologie și alte secții, precum și zootehnie specială de laborator. În multe țări (SUA, Marea Britanie, Germania, Franța, URSS etc.) există centre științifice corespunzătoare, a căror coordonare este realizată de Comitetul Internațional pentru Știința L.(YCLAS).

Literatură:
Bashenina N.V., Ghid pentru păstrarea și creșterea unor noi specii de rozătoare mici în practica de laborator. M., 1975;
Reguli sanitare pentru amenajarea, echiparea și întreținerea clinicilor biologice experimentale (vivarii), M., 1973.

Publicații conexe:

1. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2018-8-4-207-217.

1. Makarova M.N., Rybakova A.V., Gushchin Ya.A., Shedko V.V., Muzhikyan A.A., Makarov V.G. Caracteristici anatomice și fiziologice tractului digestiv la oameni și animale de laborator // Buletinul Internațional de Medicină Veterinară. -2016, nr 1. -S. 82-104.
2. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Dihorii ca animale de laborator // Buletinul Veterinar Internațional. -2016, nr 2. -S. 103-116.
3. Rybakova A.V., Kovaleva M.A., Kalatanova A.V., Vanatiev G.V., Makarova M.N. Porcii pitici ca obiect al studiilor preclinice // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2016, nr 3. -S. 168-176.
4. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Dihorii ca animale de laborator // Proceedings of the IV International Congress of Veterinary Pharmacologists and Toxicologists „Medicamente eficiente și sigure în medicina veterinară”. Sankt Petersburg, 2016. -S. 46-47.
5. Goryacheva M.A., Gushchin Ya.A., Kovaleva M.A., Makarova M.N. Posibilitatea utilizării clorhidratului de lidocaină și clorură de potasiu pentru eutanasierea iepurilor de laborator // Proceedings of the IV International Congress of Veterinary Pharmacologists and Toxicologists „Medicamenturi eficiente și sigure în medicina veterinară”. Sankt Petersburg, 2016. -S. 55-56.
6. Rybakova A.V., Makarova M.N. Întreținerea și îngrijirea corespunzătoare a porcilor pigmei pentru studii preclinice // Proceedings of the IVth International Congress of Veterinary Pharmacologists and Toxicologists "Effective and safe drugs in veterinary medicine". Sankt Petersburg, 2016. -S. 46-47.
7. Susoev A.I., Avdeeva O.I., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Experiența studiului preclinic al dispersabilului oral medicamente despre hamsteri // Rezumate ale conferinței științifice-practice a VII-a " Probleme reale evaluarea siguranței medicamentelor”. Aplicație electronică la jurnalul „Sechenovskiy vestnik”. -2016, Nr. 2(24). -CU. 34-35.
8. Kalatanova A.V., Avdeeva O.I., Makarova M.N., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Vanatiev G.V., Makarov V.G., Karlina M.V., Pozharitskaya O.N. Utilizarea pungilor de obraz de hamster în studiile preclinice ale medicamentelor dispersate în cavitatea bucală // Farmacie. -2016, nr. 7. -CU. 50-55.
9. Rybakova A.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Utilizarea iepurilor în studiile preclinice // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2016, nr 4. -S. 102-106.
10. Gaidai E.A., Makarova M.N. Utilizarea degusului ca animale de laborator // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2017, nr 1. -S. 57-66.
11. Rybakova A.V., Makarova M.N. Caracteristici zootehnice ale păstrării porcilor pigmei în vivarii experimentale // Buletinul veterinar internațional. -2017, nr 1. -S. 66-74.
12. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V., Zozulya O.K. Nutriția animalelor de laborator. Dietele de bază. Mesaj 1. // Buletinul veterinar internațional. -2017, nr 2. -S. 91-105.
13. Makarova M.N., Makarov V.G., Shekunova E.V. Alegerea speciilor de animale pentru evaluarea neurotoxicității substanțelor farmacologice // Buletinul Veterinar Internațional. -2017, nr 2. -S. 106-113.
14. Rybakova A.V., Makarova M.N. Utilizarea gerbililor pentru cercetarea biomedicală // Buletinul veterinar internațional. -2017, nr 2. -S. 117-124.
15. Bondareva E.D., Rybakova A.V., Makarova M.N. Caracteristici zootehnice ale ținerii cobailor în vivarii experimentale // Buletinul Veterinar Internațional. -2017, nr 3. -S. 108-115.
16. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Anatomie comparată tractul gastrointestinal superior al animalelor de experiență și al omului // Buletinul veterinar internațional. -2017, nr 3. -S. 116-129.
17. Makarova M.N., Makarov V.G. Nutriția animalelor de laborator. Semne de deficit și exces de proteine, grăsimi, carbohidrați și vitamine. Mesaj 2. // Buletinul veterinar internațional. -2017, nr 3. -S. 129-138.
18. Makarova M.N., Rybakova A.V., Kildibekov K.Yu. Cerințe de iluminat în incinta unui vivarium și a unei pepiniere pentru animale de laborator // Buletinul Internațional de Medicină Veterinară. -2017, nr 3. -S. 138-147.
19. Rybakova A.V., Makarova M.N. Utilizarea hamsterilor în cercetarea biomedicală // Buletinul veterinar internațional. -2017, nr 3. -S. 148-157.
20. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V. Nutriția animalelor de laborator. Semne de deficit și exces de compuși minerali. Mesaj 3 // Buletinul veterinar internațional. -2017, nr 4. -S. 110-116.
21. Muzhikyan A.A., Zaikin K.O., Gushchin Ya.A., Makarova M.N., Makarov V.G. Morfologia comparativă a ficatului și a vezicii biliare la oameni și animale de laborator // International Veterinary Bulletin. -2017, nr 4. -S. 117-129.
22. Rybakova A.V., Makarova M.N. Utilizarea cobaiului în cercetarea biomedicală // Buletinul veterinar internațional. -2018, nr 1. -S. 132-137.
23. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Morfologia comparativă a tractului gastrointestinal inferior al animalelor de experiență și al omului // Buletinul veterinar internațional. -2018, nr 1. - S. 138-150.
24. Rudenko L., Kiseleva I., Krutikova E., Stepanova E., Rekstin A., Donina S., Pisareva M., Grigorieva E., Kryshen K., Muzhikyan A., Makarova M., Sparrow E.G., Marie-Paule G.T. Motivația vaccinării cu vaccinuri gripale vii atenuate trivalente sau cvadrivalente: Eficacitatea vaccinului protector în modelul dihorului // PLOS ONE. - 2018. - P. 1-19.
25. Rybakova A.V., Makarova M.N., Kukharenko A.E., Vichare A.S., Rüffer F.-R. Cerințe și abordări existente pentru dozarea medicamentelor la animalele de laborator // Vedomosti Centrul de Știință examinarea fondurilor uz medical. – 2018, 8(4). - S. 207-217.

Datorită faptului că virusurile se pot reproduce numai în celulele vii, în primele etape ale dezvoltării virologiei, cultivarea virusurilor în corpul animalelor de laborator, special cultivate pentru cercetare, a fost utilizată pe scară largă.

Utilizați: 1) pentru a detecta virusul în PM 2) izolarea primară a virusului din PM 3) acumularea de masă virală 4) menținerea virusului în laborator în stare activă. 5) titrarea virusului 6) ca obiect de testare in pH 6) obtinerea de seruri hiperimune. Animale utilizate: șoareci albi (rabie, febră aftoasă), șobolani albi (gripa porcină, b. Aujeszky), cobai (rabie, febră aftoasă, cirela canină). Iepuri (rabie, mixoame de iepure).

Cerințe pentru animalele de laborator - animalul trebuie să fie sensibil la acest virus; vârsta lui are mare importanță pentru cultivarea multor virusuri. Majoritatea virusurilor se înmulțesc mai bine în corpul animalelor tinere și chiar nou-născute; sensibilitatea standard se realizează prin selectarea animalelor de o anumită vârstă și identice ca greutate. Din punct de vedere al sensibilității, așa-numitele animale liniare obținute ca urmare a încrucișărilor strâns legate de-a lungul unui număr de generații au cea mai mare standarditate; animalele de laborator trebuie să fie sănătoase. Animalele care intră în vivariumul laboratorului virologic trebuie aduse dintr-un seif boli infecțioase economie. Sunt ținuți în carantină și sunt sub observație clinică. În prezența unei boli, acestea sunt distruse.

Animalele sunt plasate astfel încât, pe de o parte, funcționarea tuturor sistemelor corpului din interiorul normă fiziologică, pe de altă parte, reinfecția reciprocă și răspândirea infecției în afara vivariumului sunt excluse. Folosit pentru animale de diferite specii căi diferite etichetă individuală. Pentru animalele mari și găini, se folosesc etichete metalice cu un număr ștampilat. Când utilizați un grup mic de animale în experiment și pentru o perioadă scurtă de timp, puteți tăia părul cu semne pe spate, șolduri. Eticheta de șoareci albi, șobolani albi poate fi efectuată prin amputarea degetelor individuale pe membrele din față sau din spate. Folosiți adesea metoda de aplicare a petelor colorate pe lâna nepigmentată. Infecția animalelor de laborator.

• 1. subcutanat – spate.
• 2. Intradermic - călcâi
• 3. Intramuscular - coapsa
• 4. Intravenos - în coadă (după frecare apa fierbinteși a supraviețuit)
• 5. Intranozal - o picătură în nas (dați anterior o anestezie cu eter slab pentru a preveni strănutul)
• 6. Interocerebral - craniul este găurit cu atenție cu un ac, nu apăsați, picătura dispare de la sine.

Toate suprafețele sunt pre-lubrificate cu alcool iodat.

Pregătirea de laborator. animale (pe exemplul unui șoarece alb)

• - Pielea este lubrifiată cu un dezinfectant.
• - Se face o incizie de-a lungul liniei alba.
• - Deschiderea sternului - se prelevează plămânii și se pun în eprubeta nr. 1
• - Autopsie cavitate abdominală- se prelevează ficatul, splina, rinichiul și se introduc în eprubeta nr.2.
• - Craniul este deschis. Se ia creierul, se realizează secțiuni din 4 straturi, se pun piesele pe hârtie de filtru și se realizează imprimeuri pe sticlă.

GOST 33216-2014

Grupa T58

STANDARD INTERSTATAL

GHID PENTRU ȚINEREA ȘI ÎNGRIJIREA ANIMALELOR DE LABORATOR

Ghid pentru cazare și îngrijire a animalelor. Prevederi specifice speciei pentru rozatoarele de laborator si iepuri

MKS 13.020.01

Data introducerii 2016-07-01

cuvânt înainte

Obiectivele, principiile de bază și procedura de bază pentru efectuarea lucrărilor privind standardizarea interstatală sunt stabilite în GOST 1.0-92 „Sistemul de standardizare interstatală. Dispoziții de bază” și GOST 1.2-2009 „Sistem de standardizare interstatală. Standarde interstatale, reguli, recomandări pentru standardizarea interstatală. Reguli pentru dezvoltarea, adoptarea, aplicarea, actualizarea și anularea”

Despre standard

1 DEZVOLTAT de Parteneriatul Necomercial „Asociația Specialiștilor în Lucrul cu Animalele de Laborator” (Rus-LASA)

2 INTRODUS de Comitetul Tehnic de Standardizare TC 339 „Siguranța materiilor prime, a materialelor și a substanțelor”

3 ADOPTAT de Consiliul Interstatal pentru Standardizare, Metrologie și Certificare (Proces-verbal din 22 decembrie 2014 N 73-P)

4 Prin ordinul Agenției Federale pentru Reglementare Tehnică și Metrologie din 9 noiembrie 2015 N 1733-st, standardul interstatal GOST 33216-2014 a fost pus în aplicare ca standard național Federația Rusă de la 1 iulie 2016

5 Acest standard este în conformitate cu documentul internațional Convenția europeană pentru protecția animalelor vertebrate utilizate în scopuri experimentale și în alte scopuri științifice (ETS N 123)* (Convenția europeană pentru protecția animalelor vertebrate utilizate în scopuri experimentale și în alte scopuri științifice (ETS N 123)).
________________
* Accesul la documentele internaționale și străine menționate în continuare în text se poate obține făcând clic pe link-ul către site-ul http://shop.cntd.ru. - Nota producătorului bazei de date.


Traducere din în limba engleză(ro).

Grad de conformitate - neechivalent (NEQ)

6 INTRODUS PENTRU PRIMA Oara


Informațiile despre modificările aduse acestui standard sunt publicate în indexul anual de informații „Standarde naționale”, iar textul modificărilor și amendamentelor - în indexul lunar de informații „Standarde naționale”. În cazul revizuirii (înlocuirii) sau anulării acestui standard, un anunț corespunzător va fi publicat în indexul lunar de informații „Standarde naționale”. Sunt de asemenea plasate informații relevante, notificări și texte Sistem informatic utilizare generală - pe site-ul oficial al Agenției Federale pentru Reglementare Tehnică și Metrologie pe Internet

Introducere

Introducere

Statele membre ale Consiliului Europei au hotărât că scopul lor este protecția animalelor utilizate în scopuri experimentale și în alte scopuri științifice, ceea ce reprezintă o garanție că eventualele dureri, suferințe, stres sau daune cu consecințe pe termen lung asupra sănătății rezultate din proceduri vor fi minimizate.

Rezultatul a fost semnarea și ratificarea de către majoritatea statelor membre ale Consiliului Europei (toate statele Uniunii Europene, precum și Macedonia, Norvegia, Serbia, Regatul Unit al Marii Britanii și Irlandei de Nord, Elveția) a Convenției pentru protecția animalelor vertebrate utilizate în experimente sau în alte scopuri științifice ETS N 123, denumită Convenția de la Strasbourg, 1981 (denumită în continuare Convenția de la Strasbourg).

Convenția se aplică tuturor activităților legate de utilizarea animalelor de laborator: plasarea și îngrijirea acestora, desfășurarea de experimente, uciderea umană (eutanasie), eliberarea autorizațiilor de utilizare a animalelor în proceduri, controlul asupra crescătorilor, furnizorilor și utilizatorilor, educația și formarea personalului, contabilitatea statistică. Convenția are două anexe tehnice care conțin îndrumări privind îngrijirea și întreținerea animalelor de laborator (Anexa A) și tabele pentru prezentarea informațiilor statistice privind numărul de animale utilizate în scopuri științifice (Anexa B).

Cel puțin o dată la cinci ani, Convenția este supusă revizuirii în cadrul consultărilor multilaterale ale părților, desfășurate de un grup de lucru, pentru a analiza conformitatea prevederilor sale cu circumstanțe în schimbare și cu noile date științifice. Ca urmare, se ia decizia de a revizui anumite prevederi ale Convenției sau de a le extinde valabilitatea.

În cadrul consultărilor, părțile implică state care nu sunt membre ale Consiliului Europei, precum și interacționează cu organizații neguvernamentale care reprezintă interesele unui număr de specialiști: cercetători, medici veterinari, crescătorii de animale de laborator, asociațiile pentru drepturile animalelor, oamenii de știință al animalelor, reprezentanții industriei farmaceutice și alții care participă la reuniunile grupului de lucru în calitate de observatori.

În 1998, semnatarii Convenției au decis să revizuiască anexa A. Grup de lucru a finalizat revizuirea anexei A la cea de-a 8-a reuniune (22-24 septembrie 2004) și a prezentat-o ​​spre aprobare Consultației cu mai multe părți interesate a părților. La 15 iunie 2006, cea de-a patra Consultare Multilaterală a Părților privind Convenția Europeană pentru Protecția Animalelor Vertebrate utilizate în scopuri experimentale și în alte scopuri științifice a adoptat o Anexă A revizuită la Convenție. Această anexă stabilește cerințe pentru întreținerea și îngrijirea animalelor pe baza cunoștințe moderneși bune practici. El clarifică și completează principalele prevederi ale articolului nr. 5 din convenție. Scopul acestei aplicații este de a ajuta organisme guvernamentale, instituții și indiviziiîn încercarea lor de a atinge obiectivele Consiliului Europei în acest sens.

Capitolul „General” este un ghid pentru adăpostirea, întreținerea și îngrijirea tuturor animalelor utilizate în scopuri experimentale și în alte scopuri științifice. Îndrumări suplimentare cu privire la tipurile cele mai frecvent utilizate sunt furnizate în secțiunile relevante. În absența informațiilor într-o astfel de secțiune, trebuie respectate cerințele date în partea generală.

Secțiunile specifice speciei se bazează pe recomandările grupurilor de experți pentru rozătoare, iepuri, câini, pisici, dihori, primate non-umane, animale de fermă, mini-porci, păsări, amfibieni, reptile și pești. Grupurile de experți au furnizat informații științifice și practice suplimentare, pe baza cărora s-au făcut recomandări.

Anexa A include sfaturi privind proiectarea adăposturilor pentru animale (vivariums), precum și recomandări și linii directoare pentru respectarea cerințelor Convenției. Cu toate acestea, standardele de cameră recomandate sunt minimele acceptabile. În unele cazuri, poate fi necesară creșterea acestora, deoarece nevoile individuale pentru micromediu pot diferi semnificativ în funcție de tipul de animal, vârsta lor, condiție fizică, densitatea, scopul păstrării animalelor, de exemplu, pentru reproducere sau experimente, precum și durata ținerii acestora.

Anexa A revizuită a intrat în vigoare la 12 luni de la adoptare - 15 iunie 2007.

Acest standard a fost elaborat ținând cont de prevederile de reglementare ale Convenției Europene pentru Protecția Animalelor Vertebrate utilizate în Experimente și în alte scopuri științifice (ETS N 123), în special Anexa A și Articolul N 5 din Convenție.

Seria GOST „Orientări pentru întreținerea și îngrijirea animalelor de laborator” a fost elaborată pe baza și include toate prevederile Anexei A la Convenția pentru Protecția Animalelor Vertebrate utilizate în experimente și în alte scopuri științifice, și astfel aceste standarde sunt armonizate cu cerințele europene în acest domeniu.

1 domeniu de utilizare

Acest standard stabilește cerințe generale pentru adăpostirea, întreținerea și îngrijirea rozătoarelor și iepurilor de laborator utilizați în scopuri educaționale, experimentale și în alte scopuri științifice.

2 Referințe normative

Acest standard folosește referințe normative la următorul standard:

GOST 33215-2014 Ghid pentru întreținerea și îngrijirea animalelor de laborator. Reguli de dotare a spațiilor și proceduri de organizare

Notă - Atunci când utilizați acest standard, este recomandabil să verificați valabilitatea standardelor de referință în sistemul de informare publică - pe site-ul oficial al Agenției Federale pentru Reglementare Tehnică și Metrologie pe Internet sau conform indexului anual de informații „Standarde naționale”, care a fost publicat la 1 ianuarie a anului curent, și conform emisiunilor indexului de informații lunar „Standarde naționale” pentru anul curent. Dacă standardul de referință este înlocuit (modificat), atunci când utilizați acest standard, trebuie să vă ghidați după standardul de înlocuire (modificat). În cazul în care standardul la care se face referire este anulat fără înlocuire, prevederea în care se face referire la acesta se aplică în măsura în care această referință nu este afectată.

3 Termeni și definiții

Acest standard folosește termeni cu definițiile corespunzătoare - conform GOST 33215-2014.

4 Cerințe specifice speciei pentru păstrarea rozătoarelor

4.1 Introducere

4.1.1 Șoareci

Șoarecele de laborator a fost crescut de la șoarecele sălbatic de casă (Mus musculus), un animal care se cațără și se cațără, care este predominant nocturn și construiește cuiburi pentru a regla condițiile de micromediu, adăpost și reproducere. Șoarecii sunt alpiniști foarte buni, dar sunt reticenți în a traversa spațiile deschise și preferă să stea aproape de adăposturi - pereți sau alte obiecte. Tipul de organizare socială a comunităților de șoareci variază și este determinat în principal de densitatea populației. Masculii activi din punct de vedere reproductiv prezintă un comportament teritorial pronunțat; femelele gestante și care alăptează pot manifesta agresivitate atunci când protejează cuiburile. Din moment ce șoarecii, în special albinoșii, au vedere slabă, se bazează în principal pe simțul mirosului și lasă urme de urină pe habitat. Soarecii au si un auz foarte acut, sunt sensibili la ultrasunete. Există diferențe semnificative în comportamentul șoarecilor din diferite tulpini.

4.1.2 Sobolani

Șobolanul de laborator a fost crescut din șobolanul gri (Rattus norvegicus). Șobolanii sunt animale sociale, evită spațiile deschise și folosesc urme de urină pentru a marca teritoriul. Simțul lor al mirosului și auzului sunt foarte dezvoltate, în timp ce șobolanii sunt deosebit de sensibili la ultrasunete; Vederea în timpul zilei este slabă, dar în unele linii pigmentate, vederea este destul de clară în lumină slabă. Sobolanii albinosi evita nivelurile de lumina peste 25 lux (lx). Sobolanii sunt mai activi noaptea. Animalele tinere sunt foarte curioase și au adesea jocuri sociale.

4.1.3 Gerbili

Gerbilul mongol sau de la amiază (Meriones sp.) este un animal social care este predominant nocturn, dar în condiții de laborator rămâne activ la lumina zilei. ÎN natura salbatica gerbilii se înființează cu intrări în tunel pentru a se proteja de prădători și, prin urmare, prezintă adesea vizuini stereotipe în medii de laborator, cu excepția cazului în care sunt prevăzute cu condiții pentru vizuinări.

4.1.4 Hamsteri

Strămoșul sălbatic al hamsterului de laborator este Mesocricetus sp. - un animal care duce un stil de viață predominant solitar. Femelele hamsteri sunt mai mari și mai agresive decât masculii și își pot răni grav partenerul. Hamsterii aranjează adesea un loc separat în cușcă pentru o toaletă și marchează teritoriul cu secretele glandelor situate pe părțile laterale ale corpului. Femelele hamsteri mănâncă adesea puii pentru a reduce numărul puilor.

4.1.5 Cobai

Cobaii sălbatici (Cavia porcellus) sunt rozătoare sociale, care se mișcă activ, care nu sapă niciodată gropi, ci se instalează în adăposturi sau folosesc gropile altor oameni. Masculii adulți pot fi agresivi unul față de celălalt, dar, în general, agresivitatea este rar observată. Cobaii tind să înghețe atunci când aud un sunet neașteptat. Ei pot fugi ca grup în panică, ca răspuns la o mișcare bruscă și neașteptată. Cobaii sunt deosebit de sensibili la mutarea dintr-un loc în altul și pot îngheța treizeci de minute sau mai mult după aceea.

4.2 Controlul habitatului

4.2.1 Ventilatie - conform GOST 33215-2014, clauza 4.1.

4.2.2 Temperatura

Rozatoarele trebuie pastrate la temperaturi intre 20°C si 24°C. În locuințele de grup, temperatura în cuști cu fund solid este adesea mai mare decât temperatura camerei și, chiar și cu o ventilație care funcționează bine, o poate depăși cu 6 ° C. Materialele de construcție a cuiburilor și casele permit animalelor să controleze singure microclimatul. Atentie speciala trebuie acordată atenție menținerii temperaturii în sistemele de bariere și acolo unde sunt ținute animalele goale.

4.2.3 Umiditatea

Umiditatea relativă în adăposturile rozătoarelor trebuie menținută între 45% și 65%. Excepție fac gerbilii, care ar trebui păstrați la 35-55% umiditate relativă.

4.2.4 Iluminat

Iluminarea celulei ar trebui să fie scăzută. Rafturile pentru cuști ar trebui să aibă un raft superior întunecat pentru a reduce riscul degenerării retinei la animale, în special la albinoși, ținute în cuști de nivel superior. Pentru a observa animalele în întuneric în timpul fazei lor active, puteți folosi lumina roșie invizibilă pentru rozătoare.

4.2.5 Zgomot

Deoarece rozătoarele sunt foarte sensibile la ultrasunete și le folosesc pentru a comunica, semnalele audio străine din acest interval ar trebui menținute la minimum. Ultrasunetele (peste 20 kHz) de la echipamentele de laborator, inclusiv robinetele care picura, roțile cărucioarelor și monitoarele computerului, pot provoca comportament anormal și tulburări de reproducere la animale. Se recomandă măsurarea periodică a nivelului de zgomot în incintă pentru păstrarea animalelor într-o gamă largă de frecvențe și pentru o perioadă lungă de timp.

4.2.6 Cerințe pentru sistemele de alarmă - în conformitate cu GOST 33215-2014, clauza 4.6.

4.3 Condițiile și factorii care afectează sănătatea animală sunt dați în GOST 33215-2014, clauzele 6.1 și 6.4.

4.4.1 Plasarea

Animalele sociale trebuie ținute în grupuri constante și armonioase, deși în unele cazuri, de exemplu, când șoarecii masculi adulți, hamsterii sau gerbilii sunt ținuți împreună, păstrarea grupului este problematică din cauza agresiunii intraspecifice.

Dacă există riscul de agresiune sau rănire, animalele pot fi ținute individual. Încălcarea grupurilor stabile și armonioase trebuie evitată, deoarece aceasta poate provoca stres foarte sever la animale.

4.4.2 Îmbogățirea habitatului

Cuștile și materialele folosite pentru a îmbogăți mediul ar trebui să permită animalelor să manifeste un comportament normal și să reducă probabilitatea unor situații de conflict.

Materialele de așternut și de cuibărit, precum și adăposturile, sunt componente importante ale habitatului utilizat pentru reproducere, întreținerea coloniei sau experimentare. Ei trebuie să fie prezenți în cușcă în orice moment, cu excepția cazului în care acest lucru este contrar considerentelor veterinare sau dăunează bunăstării animalelor. Dacă este necesară îndepărtarea acestor materiale din cuști, aceasta ar trebui coordonată cu personalul de îngrijire a animalelor și cu o persoană competentă cu autoritate de consiliere pentru bunăstarea animalelor.

Materialul de construcție a cuibului trebuie să permită animalelor să construiască un cuib complet închis. În absența unei astfel de oportunități, animalelor ar trebui să li se ofere case de cuibărit. Materialul de așternut ar trebui să absoarbă urina și să fie folosit de animale pentru a lăsa urme de urină. Materialele de cuibărit sunt esențiale pentru șoareci, șobolani, hamsteri și gerbili, deoarece le permit să creeze un micromediu potrivit pentru odihnă și reproducere. Cuiburile și alte ascunzători sunt importante pentru cobai, hamsteri și șobolani.

Cobaii ar trebui să primească întotdeauna materiale, cum ar fi fân, pentru a mesteca și a se ascunde.

Bețișoarele de lemn pentru ronțăit și mestecat pot fi folosite ca îmbogățire a habitatului pentru toate rozătoarele de laborator.

Reprezentanții majorității speciilor de rozătoare încearcă să împartă cușca în mai multe zone - pentru consum și depozitare a alimentelor, odihnă și urinare. O astfel de separare se poate baza pe un semn de miros și nu barieră fizică Cu toate acestea, barierele parțiale pot fi utile, deoarece permit animalelor să inițieze sau să evite contactul cu perecheii lor de cușcă. Pentru a complica mediul, este foarte recomandat să folosiți obiecte suplimentare. Tuburile, cutiile și suporturile pentru cățărare sunt exemple de modele care au fost folosite cu succes pentru rozătoare. În plus, vă permit să creșteți suprafața utilă a celulei.

Gerbilii au nevoie de mai mult spațiu decât alte specii de rozătoare. Zona cuștii ar trebui să le permită să construiască și/sau să folosească vizuini de dimensiuni adecvate. Gerbilii au nevoie de un strat gros de așternut pentru săpat, construirea de cuiburi și vizuini, care ar trebui să aibă o lungime de până la 20 cm.

Trebuie luată în considerare utilizarea celulelor translucide sau ușor colorate, cu condiția recenzie buna a observa animalele fără a le deranja.

Aceleași principii privind calitatea și cantitatea spațiului, materialele de îmbogățire și alte cerințe stabilite în acest document ar trebui să se aplice sistemelor de bariere, cum ar fi sistemele cu cuști ventilate individual (IVC), deși proiectarea lor poate necesita modificări în implementarea principiilor de mai sus.

4.4.3 Incinte: dimensiuni și structura podelei

Cuștile ar trebui să fie făcute din materiale ușor de curățat și concepute pentru a permite observațiile fără a deranja animalele.

Odată ce animalele tinere devin active, au nevoie proporțional de mai mult spațiu decât adulții.

4.4.3.1 Dimensiuni

În acest tabel și în tabelele ulterioare care prezintă linii directoare pentru păstrarea rozătoarelor, „înălțimea cuștii” înseamnă distanța dintre podea și partea superioară a cuștii, cu mai mult de 50% din suprafața minimă a cuștii necesară pentru a avea această înălțime înainte ca materialele să fie plasate acolo pentru a crea condiții bogate în stimuli (îmbogățirea mediului).

Planificarea tratamentului trebuie să țină cont de potențialul de creștere al animalelor pentru a le oferi spațiu de locuit suficient (așa cum este detaliat în tabelele 1-5) pe durata studiului.

4.4.3.2 Structura pardoselii

Pardoseală solidă cu material de așternut sau podea perforată, de preferință pardoseli din șipci sau plasă. În cazul utilizării cuștilor cu podele din șipci sau plasă pentru animale, este necesar, dacă acest lucru nu contravine condițiilor experimentului, să se asigure suprafețe de podea solide sau întinse pentru odihnă. Pentru cobai, batoanele pot fi o alternativă. Este permis să nu se folosească material de așternut la împerecherea animalelor.

Podelele din plasă pot provoca vătămări grave, așa că ar trebui să fie verificate cu atenție pentru a detecta părți slăbite și proeminențe ascuțite și îndepărtate în timp util.

femele pe date ulterioareîn timpul sarcinii, în timpul nașterii și alăptării, trebuie ținute exclusiv în cuști cu fund solid și material de așternut.

Tabel 1 - Șoareci: dimensiuni minime ale cuștilor (garduri)

Tabelul 2 - Sobolani: dimensiuni minime ale custilor (garduri)

Tabelul 3 - Gerbili: dimensiuni minime ale cuștilor (garduri)

Tabelul 4 - Hamsteri: dimensiuni minime ale cuștilor (garduri)

Tabelul 5 - Cobai: dimensiunile minime ale cuștilor (gardurilor)

4.4.4 Hrănirea - conform GOST 33215-2014, clauza 6.6.

4.4.5 Udare - în conformitate cu GOST 33215-2014, clauza 6.7.

4.4.6 Material de așternut, cuib și absorbant - conform GOST 33215-2014, clauza 6.8.

4.4.7 Curățarea celulelor

În ciuda necesității de a menține standarde ridicate de igienă, poate fi potrivit să lăsați niște urme de miros pe animale. Trebuie evitată curățarea prea frecventă a cuștilor, mai ales atunci când se păstrează femelele gravide și femelele cu descendenți, deoarece tulburările cauzate pot determina femela să mănânce puii sau să-i perturbe comportamentul matern.

Decizia cu privire la frecvența curățării cuștilor trebuie luată ținând cont de tipul de cușcă utilizată, speciile de animale, densitatea coloniilor, capacitatea sistemelor de ventilație de a menține calitatea cerută aer în cameră.

4.4.8 Manipularea animalelor

Ar trebui să vă străduiți să provocați deranjamente minime animalelor și să nu încălcați condițiile de întreținere a acestora, ceea ce este deosebit de important pentru hamsteri.

4.4.9 Eutanasie - conform GOST 33215-2014, clauza 6.11.

4.4.10 Menținerea înregistrărilor - în conformitate cu GOST 33215-2014, clauza 6.12.

4.4.11 Identificare - conform GOST 33215-2014, clauza 6.13.

5 Cerințe specifice speciei pentru creșterea iepurilor

5.1 Introducere

În condiții naturale, iepurii (Oryctolagus cuniculi) trăiesc în colonii. Când sunt ținute în captivitate, trebuie să li se asigure spațiu suficient cu un mediu îmbogățit, a cărui lipsă poate duce la pierderea activității motorii normale și la apariția unor anomalii ale scheletului.

5.2 Controlul habitatului

5.2.1 Ventilație - conform GOST 33215-2014, clauza 4.1.

5.2.2 Temperatura

Iepurii trebuie ținuți între 15°C și 21°C. Temperatura din incinte cu fund solid în care este ținut un grup de iepuri este cel mai adesea peste temperatura camerei și, chiar și cu un sistem de ventilație care funcționează bine, o poate depăși cu 6 ° C.

Materialul cuiburilor și/sau colibele permit animalelor să-și controleze propriul microclimat. O atenție deosebită trebuie acordată citirilor de temperatură în sistemele de barieră.

5.2.3 Umiditatea

Umiditatea relativă a aerului din spațiile pentru ținerea iepurilor nu trebuie să fie mai mică de 45%.

5.4.1 Plasarea

Iepurii și femelele tinere trebuie ținute în grupuri armonioase. Izolarea este acceptabilă dacă este din motive de bunăstare a animalelor sau din motive veterinare. Decizia de a permite ca animalele să fie ținute în izolare în scopuri experimentale ar trebui luată în consultare cu personalul de îngrijire a animalelor și cu o persoană responsabilă cu autoritate de consiliere în ceea ce privește stare mentala animalelor. Masculii adulți necastrați pot manifesta agresivitate teritorială și nu trebuie ținuți împreună cu alți masculi necastrați. Pentru creșterea în grup a femelelor tinere și adulte, țarcuri în aer liber cu un habitat bogat s-au dovedit a fi excelente. Cu toate acestea, ar trebui să urmăriți îndeaproape grupul pentru a preveni o posibilă agresiune. Tovarășii de așternut sunt ideali pentru păstrarea grupului, trăind împreună din momentul în care sunt înțărcați de mama lor. În cazurile în care păstrarea în grup nu este posibilă, animalele ar trebui să fie cât mai aproape una de cealaltă, la vedere.

5.4.2 Îmbogățirea habitatului

Materialele potrivite pentru îmbogățirea habitatului iepurilor sunt furajele, blocurile de fân sau bețișoarele de mestecat și structurile de adăpost.

Tarcurile de podea pentru locuințe de grup ar trebui să prevadă amplasarea de bariere de separare și structuri de adăpost care să permită animalelor să observe de acolo. La creșterea iepurilor, trebuie furnizate material de cuibărit și cutii de maternitate.

5.4.3 Incinte: dimensiuni și structura podelei

Trebuie acordată preferință cuștilor dreptunghiulare, care ar trebui să aibă o suprafață înălțată care să nu depășească 40% din suprafața totală a podelei. Raftul trebuie să permită animalelor să stea și să se întindă, precum și să se miște liber sub el. Deși înălțimea cuștii ar trebui să permită iepurelui să stea fără ca vârfurile urechilor sale ridicate să atingă tavanul, aceeași cerință nu se aplică unei platforme ridicate. Dacă există suficiente motive științifice sau veterinare pentru a nu plasa un astfel de raft în cușcă, atunci zona cuștii ar trebui să fie cu 33% mai mare pentru un iepure și 60% pentru doi iepuri. Acolo unde este posibil, iepurii trebuie ținuți în țarcuri.

5.4.3.1 Dimensiuni

Tabel 6 - Iepuri peste 10 săptămâni: dimensiuni minime ale incintei

Datele din Tabelul 6 se aplică atât cuștilor, cât și volierelor. Cuștile trebuie să aibă o platformă ridicată (vezi Tabelul 9). Incintele ar trebui să fie echipate cu bariere de separare pentru a permite animalelor să inițieze contactele sociale sau evitați-le. Pentru fiecare de la al 3-lea la al 6-lea iepure plasat în volieră, în zona volierei trebuie adăugate 3000 cm2, iar pentru fiecare următor - 2500 cm3.

Tabel 7 - Femela iepure cu pui: dimensiuni minime ale gardurilor

Cu cel puțin 3-4 zile înainte de a naște, femela trebuie să fie prevăzută cu o cutie separată sau cutie de naștere în care să își poată construi un cuib. Este mai bine dacă cutia de maternitate este plasată în afara locului în care femela este ținută permanent. De asemenea, trebuie furnizate paie sau alt material de cuibărit. Garma pentru iepuri de reproducție ar trebui organizată astfel încât femela să poată scăpa de iepurii ei adulți, care pot părăsi cuibul, într-un compartiment separat, adăpost sau pe o platformă ridicată. După înțărcare, iepurii din același așternut trebuie ținuți împreună cât mai mult timp posibil în același incintă în care s-au născut.

Până la opt tovarăși sunt permisi în incinta de reproducere până la vârsta de șapte săptămâni. Cinci tovarăși cu vârsta de 8-10 săptămâni pot fi ținuți în zona minimă permisă a gardului.


Tabel 8 - Iepuri sub 10 săptămâni: dimensiuni minime ale incintei

Datele din Tabelul 8 se aplică atât cuștilor, cât și volierelor. Incintele ar trebui să fie echipate cu bariere de separare pentru a permite animalelor să inițieze sau să evite contactul social. După înțărcare, tovarășii trebuie ținuți împreună cât mai mult timp posibil în același incintă în care s-au născut.


Tabelul 9 - Iepuri cu vârsta peste 10 săptămâni: Dimensiunile optime ale suprafeței înălțate în incinte având dimensiunile prezentate în Tabelul 6.

A furniza utilizarea corectă a platformei ridicate și a gardului în general, în Tabelul 9 sunt prezentate dimensiunile și înălțimea optime la care se află platforma. Este permisă o abatere de până la 10% în direcția scăderii sau creșterii dimensiunilor specificate. Dacă există suficiente motive științifice sau veterinare pentru a nu include un astfel de raft în incintă, atunci aria incintei ar trebui să fie cu 33% mai mare pentru un iepure și 60% pentru doi iepuri, pentru a le oferi spațiu pentru activitatea locomotorie normală și capacitatea de a evita contactul cu individul dominant.

Pentru iepurii cu vârsta nu mai mare de 10 săptămâni, dimensiunile optime ale platformei ridicate sunt de 55 cm25 cm, iar înălțimea acesteia deasupra nivelului podelei ar trebui să permită animalelor să folosească atât platforma, cât și spațiul de sub ea.

5.4.3.2 Fundul cuștii

Barierele cu podele din grătare nu trebuie folosite decât dacă este prevăzut suficient spațiu pentru ca toate animalele să se odihnească simultan. Pardoselile solide cu lenjerie de pat sau podele perforate sunt mai bune decât podelele din grătare sau plasă.
MKS 13.020.01

Cuvinte cheie: animale de laborator, rozătoare, iepuri

Textul electronic al documentului
pregătit de Kodeks JSC și verificat cu:
publicație oficială
M.: Standartinform, 2016